Evaluación de alternativas al Clorotalonil para el control de viruela del maní

Autores/as

  • Claudio Oddino Departamento de Biología Agrícola, Facultad de Agronomía y Veterinaria. Universidad Nacional de Río Cuarto. Instituto de Investigación en Micología y Micotoxicología (CONICET-UNRC) https://orcid.org/0000-0002-1248-0254
  • Damian Francisco Giordano Departamento de Biología Agrícola, Facultad de Agronomía y Veterinaria. Universidad Nacional de Río Cuarto. Instituto de Investigación en Micología y Micotoxicología, IMICO (CONICET-UNRC) https://orcid.org/0000-0002-4574-5319
  • Juan Santiago Mortigliengo Departamento de Biología Agrícola, Facultad de Agronomía y Veterinaria. Universidad Nacional de Río Cuarto
  • Agustín Bazan Departamento de Biología Agrícola, Facultad de Agronomía y Veterinaria. Universidad Nacional de Río Cuarto

DOI:

https://doi.org/10.5281/zenodo.14363972

Palabras clave:

viruela, control, fungicidas multisitio, eficiencia, resistencia

Resumen

Argentina es el principal exportador mundial de maní (Arachis hypogaea). La viruela (Passalora arachidicola-Nothopassalora personata) es la enfermedad foliar más importante en todo el mundo. El manejo, se realiza principalmente a través del control químico; siendo clorotalonil el fungicida más utilizado. Si bien su eficiencia es muy buena, en los últimos años ha sido prohibido en numerosos países, por lo que se planteó como objetivo, evaluar la eficacia de fungicidas multisitio en el control de viruela y el rendimiento de maní. En 2023/24, se realizaron dos ensayos, General Cabrera y Tosquita (Córdoba). En un DBCA con 4 repeticiones, se plantearon los tratamientos, 1- Testigo, 2- Clorotalonil(1500 cc ha-1), 4 aplicaciones (apl.); 3- Fluazinam(1000 cc ha-1), 4 apl.; 4- Cobre(2000 cc ha-1), 4apl., 5- Azoxistrobina+ciproconazole(500 cc ha-1)(1ºapl.) - clorotalonil(1500 cc ha-1)(2ºapl.) – pydiflumetofen+difenoconazole(700 cc ha-1)(3ºapl.),  6- Azoxistrobina+ciproconazole(500 cc ha-1)(1ºapl.) - fluazinam(2000 cc ha-1)(2ºapl.) - pydiflumetofen+difenoconazole(700 cc ha-1)(3ºapl.) y 7- Azoxistrobina+ciproconazole(500 cc ha-1)(1ºapl.) - cobre (2000 cc ha-1)(2ºapl.) - pydiflumetofen+difenoconazole(700 cc ha-1)(3ºapl.). La evaluación de viruela se realizó a través de incidencia ( y severidad (); y el rendimiento se estimó cosechando 2 m2 por parcela; comparándose por ANAVA y test de Duncan (p<0,05). Los tratamientos con cobre y fluazinam, solos o en secuencias con fungicidas triazoles, estrobilurinas y carboxamidas, presentaron una performance similar a clorotalonil en el control de viruela y el rendimiento. Estos resultados muestran que estos fungicidas multisitio constituyen una excelente alternativa como reemplazo en caso de prohibirse este fungicida en nuestro país.

Descargas

Los datos de descargas todavía no están disponibles.

Citas

Agüero, D. (2017). Mercado internacional y nacional del maní. En: Fernandez, E.; Giayetto, O (eds). El cultivo de maní

en Córdoba. Argentina, Ediciones Universidad Nacional de Río Cuarto, Córdoba, pp 411–433

Andrés J., Pastor N., Ganuza M., Rovera M., Reynoso M.M. and Torres A.M. (2016). Biopesticides: an eco- friendly

approach for the control of soilborne pathogens in peanut. In: Singh DP, Singh HB, Prabha R (eds) Microbial

inoculants in sustainable agricultural productivity. India: springer. Vol. 1: research perspectives. Springer, India, pp

–179

Arya, S. S., Salve, A. R. and S. Chauhan. (2016). Peanuts as functional food: A review. Journal of Food Science and

Technology. 53(1), 31– 41. https://doi.org/10.1007/s13197-015-2007-9

Bartlett, D.W., Clough, J.M.,Godwin, J.R., Hall, A.A.,Hamer, M. and R. Parr-Dobrzanski. (2002). The strobilurin

fungicides. Pest Management Science. 58:649-662.

Brent, K.J. and D.W. Hollomon. (2007). Fungicide Resistance in Crop Pathogens: How Can it Be Managed?

Fungicide Resistance Action Committee Monograph No. 1, 2nd revised ed. Croplife International, Brussels, p. 60.

Cantonwine, E., Culbreath, A., Shew, B.B. and M. Boudreau. (2008). Efficacy of organically aceptable fungicides for

management of early and late leaf spot diseases in partially resistant peanut cultivars. Online. Plant Health

Progress. doi: 10.194/PHP-2008-317-03-RS

Cappiello, F., March, G., Marinelli, A., García, J., Tarditi, L., D´Eramo, L., Ferrari, S., Rago, A. y C. Oddino. (2012).

Producción de maní según intensidad de viruela (Cercosporidium personatum). Revista de Cultivos Industriales.

Maní. Año 1. Nº3: 281-286. ISSN 1853-7677.

Carley, D., Jordan, D., Shew, B., Sutton, T., Dhamasri, C. and R. Branderburg. (2009). Influence of dipping date and

fungicide program on canopy defoliation and pod yield of peanut (Arachis hypogaea). Peanut Science 6:77-84.

Castro M.S., Penha L.C., Torres T.A., Jorge, M.B., Carvalho-Costa, L.F. and G. Fillmann. (2022). Genotoxic and

mutagenic effects of chlorothalonil on the estuarine fish Micropogonias furnieri (Desmarest, 1823). Environ Science

Pollut Res. 29:23504–11. doi: 10.1007/s11356-021-17328-2

Chapin, J.W. and J.S. Thomas. (2006). Late leaf spot resistance to tebuconazole: responding to control failures, and

implications for peanut disease management programs in South Carolina. Proc. Am. Peanut Res. Ed. Soc. 38, 54

(abstr.).

Costa L.G. and M. Aschner. (2014). Toxicology of Pesticides. Reference Module in Biomedical Sciences. Elsevier doi:

1016/B978-0-12-801238-3.00208-7

Culbreath, A.K., Brenneman, T. and C.K. Kvien. (1992). Use of a resistant peanut cultivar with copper fungicides and

reduce fungicide applications for control of late leaf spot. Crop Protection 11: 361-365.

Culbreath A.K., Brenneman T.B., Kemerait R.C. and K.L. Stevenson. (2005). Relative performance of tebuconazole

and chlorothalonil for control of peanut leaf spot from 1994 through 2004 (abstr.). Proceedings of American

Peanut Research and Education Society 37:54–55

Culbreath, A.K., Brenneman, T.B., Kemerait, R.C. and K.L. Stevenson. (2012). Utility of tebuconazole for leaf spot

management in fields with resistant populations of Cercospora arachidicolaor Cercosporidiumpersonatum. Proc.

Am. Peanut Res. Educ. Soc. 44: 51–52 (abstr.).

Culbreath, A.K., Gevens, A.J. and K.L. Stevenson. (2018). Relative effects of demethylationinhibiting fungicides on

late leaf spot of peanut. Plant Health Progress. 19: 23–26.

Culbreath, A.K., Brenneman, T.B., Kemerait, R.,C. Stevenson, K.L. and D. Anco. (2019). Combinations of elemental

sulfur with demethylation inhibitor fungicides for management of late leaf spot (Nothopassalora personata) of

peanut. Crop Protection 125. 104911. https://doi.org/10.1016/j.cropro.2019.104911.

Damicone, J.P. and K.E. Jackson. (2001). Effects of application methodand rate on control of Sclerotinia blight of

peanut with iprodioneand fluazinam, Peanut Science. 28 (1): 28–33.

Di Rienzo J.A., Casanoves F., Balzarini M.G., Gonzalez L., Tablada M. y C.W. Robledo. (2020). InfoStat versión 2020.

Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina

EFSA. (2017). Peer review of the pesticide risk assessment of the active substance chlorothalonil. EFSA Journal. doi:

2903/j.efsa.2018.5126

European Commision. (2019). Commission Implementing Regulation (EU) 2019/677 of 29 April 2019 concerning

the non-renewal of the approval of the active substance chlorothalonil, in accordance with Regulation (EC) No

/2009 of the European Parliament and of the Council concerning the placing of plant protection products

on the market, and amending Commission Implementing Regulation (EU) No 40/2011. Off. J. Eur. Union, 114:

-17.

FRAC. (2021). Fungicide Resistance Action Committee. (Citado: 05/08/2021). Disponible en www.frac.info.

Fulmer, A.M., Mehra, L.K., Kemerait, R.C., Brenneman, T.B., Culbreath, A.K., Stevenson, K.L. and E.G. Cantonwine.

(2019). Relating Peanut Rx risk factors to epidemics of early and late leaf spot of peanut. Plant Disease. 103:

–3233

García, J., Oddino, C., Ferrari, S., Déramo, L., Rago, A. y G. March. (2014). Estimación de producción en maní

(Arachis hypogaea) según intensidad de la viruela (Cercosporidium personatum). Pag.Ep.- HyS 11, en Actas de

Resúmenes 3° Congreso Argentino de Fitopatología. Tucumán. ISBN 978-987-24373-1-2

Giordano, D.F., Pastor, N., Palacios, S, Oddino C., and A. Torres. (2021). Peanut leaf spot caused by Nothopassalora

personata. Tropical plant pathology. 46, 139–151. https://doi.org/10.1007/s40858-020-00411-3

Grichar, W. and J. Woodward. (2016). Fungicides and Application Timing for Control of Early Leafspot, Southern

Blight, and Sclerotinia Blight of Peanut. International Journal of Agronomy. V2016:1-7. http://dx.doi.org/

1155/2016/1848723

Hagan, A.K., Bowen, K.L., Campbell, H.L. and L. Wells. (2007). Calendar-based and AU-Pnuts advisory programs

with pyraclostrobin and chlorothalonil for the control of early leaf spot and stem rot on peanut. Peanut Science.

: 114-121.

IARC. (1999). Some chemicals that cause tumors of the kidney or urinary bladder in rodents and some other

substances. ARC Monogr Eval Carcinog Risks Hum. 73:183–93.

Jonhson, R. and E. Cantowine. (2013). Post-infections activities of fungicides Cercospora arachidicola of peanut

(Arachis hypogaea). Pest Management Science. 70(8): 1202-1206. doi: 10.1002/ps.3671.

Jordan, D., Shew, B. and P. Johnson. (2016). Response of the peanut (Arachis hypogaea) cultivar Gregory to

interactions of dipping date and management disease. Advance Agriculture. 2016: 1-9.

Klappach, K. and G. Stammler. (2019). Resistance of plant pathogens to succinate dehydrogenase inhibitor (SDHI)

fungicides (FRAC Code 7). In: Stevenson, K.L., McGrath, M.T., Wyenandt, C.A. (Eds.), Fungicide Resistance in

North America, second ed. APS Press, St. Paul, MN, pp. 85–95

Labrinos, J.L. and F.W. Nutter. (1993) Effects of protectant versus systemic fungicide on disease components of

peanut leaf spot. Plant Disease 77: 837-845.

Little, E.L. (2019). Georgia Plant Disease Loss. Annual Publication 102-10, Athens, GA, p. 21

MAG. (2023). Prohibición de clorotalonil en Costa Rica. Decreto 44280-S-MAG-MINAE. Ministerio de Agricultura

y Ganaderia de Costa Rica.

Marinelli, A. y G.J. March. (2005). Viruela. En: March, G.J.; Marinelli, A. (eds) Enfermedades del maní en Argentina.

Biblia impresores. 13-39.

Marinelli, A., Oddino C.M. y G. J. March. (2017). Enfermedades fúngicas del maní. En: Fernandez E, Giayetto O

(eds). El cultivo de maní en Argentina. 2° Edición. Ediciónes UNRC. Córdoba, Argentina, pp 285-311. ISBN

-987-42-3736-1

Monguillot, J.H, Lima, N.B., Paredes, J.A., Giordano, F., Oddino, C., Carmona, M. y C. Conforto. (2021). Inhibición

de la biomasa: un método para evaluar la sensibilidad a fungicidas en aislamientos de Nothopassalorapersonata. Pág.

C2-016. En Actas de Resúmenes V Congreso Argentino de Fitopatología y 59th Meeting of the Aps Caribbean

Division. ISBN 978-987-24373-3-6

Oddino, C., Paredes, J., Faggio, P., Cazón, I., Bisonard, M., Rago, A. y J. Giuggia. (2016). Resistencia de Cercosporidium

personatum: Avances en la evaluación in vitro de la eficiencia de diferentes grupos químicos en poblaciones del

patógeno de distintos orígenes. Págs. 45-46, en Actas de resúmenes XXXI Jornada Nacional del Maní. Gral.

Cabrera, Córdoba

Oddino, C., Giordano, F., Paredes, J., Cazón, L., Giuggia, J. y A. Rago. (2018). Efecto de nuevos fungicidas en el

control de viruela del maní y el rendimiento del cultivo. Ab Intus (1):9-17. ISSN 2618-2734.

Plaut, J. and R. Berger. (1980). Development of Cercosporidium personatum in Three Peanut Canopy Layers. Peanut

Science 7:1-11. doi: https://doi.org/10.3146/i0095-3679-7-1-11

Rossi, C., Culbreath, A., Brenneman, T., Tubbs, R., Anco, D., Vellidis G. and C. Pilon. (2023). Dodine as an

alternative to chlorothalonil in the control of leaf spot diseases in peanut. Agronomy Journal. 116:202–216. DOI:

1002/agj2.21508

Rotteveel, T., Jorgensen, L.N. and U. Heimbach. (2011). Resistance management in Europe: a preliminary proposal

for the determination of minimum number of active substances necessary to manage resistance. Bull OEPP/EPPO

Bull 41: 432–438

SAGPYA. (2023). Secretaria de Agricultura, Ganaderia, Pesca y Alimentos. En: http://www.cba.gov.ar/reparticion/

ministerio-de-agricultura-ganaderia-y-alimentos/ Consultado: 12-03-2024.

Siqueira de Azevedo, L. (2007). Fungicidas sistémicos, Teoría e Practica. 1º ed. Campinas: EMOPI. 284pp.

Smith, D., Phipps, P.M. and R. J. Stipes. (1992). Fluazinam: a new fungicide for control of Sclerotinia blight and other

soilborne pathogens of peanut, Peanut Science, 19: 115–120.

Stevenson, K.L. and A.K. Culbreath.. (2006). Evidence for reduced sensitivity to tebuconazole in leaf spot pathogens.

Proc. Am. Peanut Res. Ed. Soc. 38: 62 (abstr.).

USDA. (2023). United States Department of Agriculture. Peanut explorer. En: https://ipad.fas.usda.gov/

cropexplorer/cropview/commodityView.aspx?cropid=2221000 Consultado el 10/05/2024.

Woelke, L., Bermudez , J., Castillo, M. y E. Romero. (2015). Carboxamidas. Rotación de principios activos en el

control de la viruela del mani (Cercosporaarachidicola y Cercosporidium personatum). Págs. 87-88 en Actas de

Resúmenes XXX Jornada Nacional del Maní. General Cabrera, Córdoba.

Woodward, J. and S. Russell. (2015). Managing sclerotinia blight in peanut: evaluation of a weather-based forecasting

model to time fungicide applications in texas,” American Journal of Experimental Agriculture, vol. 9, no. 3, pp. 1–

Woodward, J., Brenneman, T.B. and R.K. Kemereit. (2013). Chemical control and peanut diseases: Targeting leaves,

stems, roots, and pods foliar-applied fungicides. Chapter 3. In Fungicides: Showcase of integrated plant disease

management from around the world (Mizuho Nita, ed.). pp. 55-76.

Descargas

Publicado

27-12-2024

Cómo citar

Oddino, C., Giordano, D. F., Mortigliengo, J. S., & Bazan, A. (2024). Evaluación de alternativas al Clorotalonil para el control de viruela del maní . Ab Intus, 7(14). https://doi.org/10.5281/zenodo.14363972

Número

Sección

Artículos

Artículos más leídos del mismo autor/a